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    小鼠白细胞介素1βELISA试剂盒Mouse IL-1βELISA KIT
    货号:HM-01
    价格 :¥2800.00/1760.00.00
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    小鼠白细胞介素定量分析酶联免疫检测试剂盒

     

    本试剂盒仅供科研使用。用于体外定量检测小鼠血清 、血浆或细胞培养上清液中的IL-1β浓度 。使用前请仔细阅读说明书并检查试剂组分是否完整,如有产品包装破损或质量投拆,请在收到货一个月之内联系88bifa。

     

    IL-1β简介:

    白介素-1又称淋巴细胞激活因子,由 IL-1α和 IL-1β两种形式的多肽类细胞因子构成,与许多的细胞活性相关,包括增殖、分化以及凋亡, 主要由血液中的单核细胞和巨噬细胞所产生, 各种上皮细胞,内皮细胞和间质细胞也能产生IL-1, 但血液中的IL-1 主要是由单核细胞和巨噬细胞所产生的IL-1β。

    由激活巨噬细胞产生的IL-1β ,经蛋白酶-1酶解活化后 ,成熟的白介素-1分子可以诱导白介素-2的释放、促进B细胞成熟与增殖 、诱导成纤维细胞生长因子活性,通过这些影响可以刺激胸腺细胞增殖,进而影响机体的免疫反应。研究表明白介素-1蛋白与炎症初始反应相关,起到调节因子的作用,通常被认为是内源性致热原;细菌的内毒素或者一些非细菌的炎症因子都会诱导IL‐1产生 ,然后被释放到局部组织,IL-1β含量升高表明机体内有组织损伤或者感染产生, 如败血症等。对IL-1β的研究主要集中在各种生理和病理免疫反应和炎症反应过程领域 。

     

    检测原理:

    本试剂盒采用双抗体夹心ELISA法检测样本中小鼠IL-1β的浓度。小鼠IL-1β捕获抗体已预包被于酶标板上,当加入标本或参考品时,其中的小鼠IL-1β会与捕获抗体结合 ,其它游离的成分通过洗涤的过程被除去 。当加入生物素化的抗小鼠IL-1β抗体后,抗小鼠IL-1β抗体与小鼠IL-1β接合,形成夹心的免疫复合物 ,其它游离的成分通过洗涤的过程被除去。随后加入辣根过氧化物酶标记的亲合素 。生物素与亲合素特异性结合,亲合素连接的酶就会与夹心的免疫复合物连接起来;其它游离的成分通过洗涤的过程被除去。最后加入显色剂,若样本中存在IL-1β将会形成免疫复合物 ,辣根过氧化物酶会催化无色的显色剂氧化成蓝色物质,在加入终止液后呈黄色。通过酶标仪检测  ,读其450nm处的OD值,小鼠IL-1β浓度与OD450值之间呈正比 ,通过参考品绘制标准曲线,对照未知样本中OD值 ,即可算出标本中IL-1β浓度。

     

    小鼠IL-1β定量分析酶联免疫检测试剂盒组成:

    组分

    规格(96T/48T)

    小鼠IL-1β预包被板

    12条/6

    样本分析缓冲液

    5ml/3ml

    标准品稀释液

    10ml/5ml

    小鼠IL-1β标准品

    2支/1支(冻干)*

    小鼠IL-1β生物素化抗体

    10ml/5ml

    亲和素连接的HRP酶

    10ml/5ml

    浓缩洗涤液 20×

    30ml/15ml

    TMB底物

    10ml/5ml

    中止液

    5ml/3ml

    封板胶纸

    3/2

    说明书

    1

     

    标本收集:

    1.标本的收集请按下列流程进行操作;

    A.细胞上清标本离心去除悬浮物后即可;

    B.血清标本应是自然凝固后,取上清 ,避免在冰箱中凝固血液 ;

    C.血浆标本 ,推荐用EDTA的方法收集 ;

    D.若待测样本不能及时检测 ,标本收集后请分装 ,冻存于-20℃,避免反复冻融 。

    2.血清标本不应添加任何防腐剂或抗凝剂;

    3.标本应清澈透明,检测前样本中如有悬浮物应通过离心去除。

    4.请勿使用溶血,高血脂或污染的标本检测,否则结果将不准确。

    注 :小鼠血清或血浆样本请用样本分析缓冲液做倍比稀释后再检测。

     

    注意事项:

    1.试剂盒请保存在28℃ 。

    2.浓缩洗涤液因在低温下可能有结晶 ,请水浴加热使结晶完全溶解后再配制工作液。

    3.标准品复溶加样后,剩余部份请丢弃 。

    4.底物请勿接触氧化剂和金属。

    5.加样时 ,请及时更换枪头 ,避免交叉污染。

    6.严禁混用不同批号的试剂盒组份 。

    7.充分混匀对保证反应结果的准性很重要,在加液后请轻轻叩击边缘以保证混匀。

    8.室温反应  ,请严格控制在25~28℃。

    9.洗涤过程是至关重要的,洗涤不充分会使精确度下降并导致结果误差较大 。

    10.试验中标准品和样本检测时建议作双复孔 。

    11.加样过程中避免气泡的产生。

    12.血清和血浆标本的检测时,检测抗体的孵育时间应适当延长。

     

    检测前准备工作:

    1.试剂盒自冰箱中取出后应置室温(25~28℃)平衡20分钟 ;每次检测后剩余试剂请及时于2~8℃保存。

    2.将浓缩洗涤液用双蒸水或去离子水稀释(1份加19份水)。

    3.如有5X准品稀释液,请按所需量用双蒸水或去离子水稀释(1份加4水)。

    4.标准品: 按标签复溶体积加入标准品稀释液复溶使IL-1β终浓度达到1000pg/ml,室温反应,请严格控制在25~28℃,静置10~15分钟后轻轻混悬(建议抽吸几次)待彻底溶解,用标准品稀释液倍比梯度稀释后依次加入检测孔中 。(标准曲线取七个点,最高浓度为1000 pg/ml,标准品稀释液直接加入作为0浓度.)

    图片2.png 

    洗涤方法:

    自动洗板机或人工洗板 :每孔洗涤液为300ul,注入与吸出间隔15-30秒。洗板5次。最后一次洗板完成后将板倒扣着在厚吸水纸上用力拍干。

     

    实验过程需自备的材料:

    1.不同规格的加样枪及相应的枪头;   

    2.酶标仪;

    3.自动洗板机;                     

    4.去离子水或双蒸水;

     

    操作步骤:

    1.通过计算并确定一次性实验所需的板条数,取出所需板条放置在框架内 ,暂时用不到板条请放回铝箔袋密封 ,保存于4℃。

    2.建议设置本底较正孔 ,即空白孔,设置方法为该孔只加TMB显色液和中止液 。每次实验均需做标准品对照并画出标准曲线。

    3.分别将标本或不同浓度标准品(100ul/孔)加入相应孔中 ,用封板胶纸封住反应孔 ,室温(25~28℃)孵育120分钟。对于血清或血浆标本,请加入50ul样本分析缓冲液后加50ul标本,如稀释量大,请将样本与样本分析缓冲液等量加入 ,不足部分用标准品稀释液补充至100ul 。     

    4.洗板5次,且最后一次置厚吸水纸上拍干。

    5.加入生物素化抗体工作液(100ul/)。用封板胶纸封住反应孔 ,室温(25~28℃)孵育60分钟。   

    6.洗板5次,且最后一次置厚吸水纸上拍干。

    7.加入亲和素连接的HRP酶工作液(100ul/) 。用封板胶纸封住反应孔,避光室温(25~28℃)孵育20分钟。

    8.洗板5次,且最后一次置厚吸水纸上拍干。

    9.加入显色剂TMB100ul/孔,避光室温(25~28℃)孵育20分钟 。

    10.加入终止液50ul/孔,混匀后即刻测量OD450值。

     

    结果判断:

    1.复孔的值在20%的差异范围内结果才有效 ,复孔的值平均后可作为测量值 。

    2.每个标准品或标本的OD值应减去本底校正孔的OD值 。

    3.手工绘制标准曲线 。以标准品浓度作横坐标,OD值作纵坐标,以平滑线连接各标准品的坐标点。通过标本的OD值可在标准曲线上查出其浓度。

    4.若标本OD值高于标准曲线上限 ,应适当稀释后重测,计算浓度时应乘以稀释倍数。

    典型数值和参考曲线

    浓度pg/ml

    典型OD1

    典型OD2

    OD平均值

    0

    0.1265

    0.137

    0.1317

    31.25

    0.3461

    0.3225

    0.3343

    62.5

    0.4044

    0.4001

    0.4022

    125

    0.6013

    0.5441

    0.5727

    250

    0.9679

    0.9261

    0.947

    500

    1.3583

    1.2583

    1.3083

    1000

    2.0169

    1.9432

    1.98

    小鼠IL-1β参考标准曲线

    图片1.png 

    注意 :本图仅供参考,应以同次试验标准品所绘标准曲线计算标本含量。

     

    灵敏度,特异性和重复性:

    1.灵敏度:多次重复结果表明,最小检出量为2.6pg/ml。

    2.特异性 :与鼠IL-1α、 IL-1ra、 IL-1 RI/Fc Chimera、 IL-1 RII/Fc Chimera,人IL-1β等没有交叉反应。

    3.重复性 :板内,板间变异系数均<10%.

     

    参考文献:

    Dinarello, C.A. and S.M. Wolff (1993) New Engl. J. of Med. 328:106.

    Hazuda, D.J. et al. (1988) J. Biol. Chem. 265:6318.

    Lomedico, P.T. et al. (1984) Nature 312:458.

    Rubartelli, A. et al. (1990) EMBO J. 9:1503.

    Kurt-Jones, E.A. et al. (1985) Proc. Natl. Acad. Sci. USA 82:1204.


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